دوره 14، شماره 2 - ( بهار 1404 1404 )
جلد 14 شماره 2 صفحات 153-140 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Rajabloo Z, Mobarak Qamsari E, Kasra Kermanshahi R. Identification and determining the pattern of antibiotic resistance and biofilm formation capacity in bacterial strains isolated from patients with burn wound infection. aumj 2025; 14 (2) :140-153
URL: http://aums.abzums.ac.ir/article-1-1857-fa.html
URL: http://aums.abzums.ac.ir/article-1-1857-fa.html
رجب لو زهرا، مبارک قمصری الهه، کسری کرمانشاهی روحا. شناسایی و تعیین الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی و قدرت تشکیل بیوفیلم در سویههای باکتریایی جدا شده از بیماران با عفونت زخم سوختگی. نشریه علمی پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی البرز. 1404; 14 (2) :140-153
1- دانشکده علوم زیستی، دانشگاه الزهرا(س)، تهران، ایران
2- دانشکده علوم زیستی، دانشگاه الزهرا(س)، تهران، ایران ،rkasra@yahoo.com
2- دانشکده علوم زیستی، دانشگاه الزهرا(س)، تهران، ایران ،
چکیده: (1139 مشاهده)
مقدمه: عفونتهای زخم سوختگی که ناشی از طیف گستردهای از باکتریها هستند، چالشهای قابل‌توجهی را برای بیماران ایجاد میکنند. این مطالعه باهدف جداسازی سویههای مقاوم به آنتیبیوتیک استافیلوکوکوس اورئوس، کلبسیلا پنومونیه، سودوموناس آئروژینوزا و اشریشیا کلی در بیماران بستری در بیمارستان سوختگی شهید مطهری تهران انجام شد. علاوه بر این، توانایی تشکیل بیوفیلم در سویههای جداشده نیز مورد بررسی قرار گرفت.
روش کار: در یک مطالعه مقطعی، نمونه‌های سواپ زخم سوختگی از 120 بیمار جمعآوری شد. پس از شناسایی بیوشیمیایی، حساسیت به آنتیبیوتیکها با استفاده از روش انتشار دیسک تعیین شد. حداقل غلظت مهار کننده (MIC) و حداقل غلظت کشنده (MBC) به همراه ارزیابی تشکیل بیوفیلم با استفاده از میکروپلیتهای 96 خانهای و رنگآمیزی تترازولیوم (TTC) تعیین شدند.
یافته‌ها: درصد باکتریهای مقاوم به حداقل 5 آنتیبیوتیک به ترتیب 60% برای کلبسیلا پنومونیه، 33/53% برای استافیلوکوکوس اورئوس، 30% برای سودوموناس آئروژینوزا و 33/13% برای اشریشیا کلی بود. تمام سویههای مقاوم به حداقل 5 آنتیبیوتیک توانایی تشکیل بیوفیلم را داشتند. شیوع بالای مقاومت به آنتیبیوتیکی در استافیلوکوکوس اورئوس همراه با افزایش تشکیل بیوفیلم در میان سویههای استافیلوکوکوس اورئوس، این فرضیه را تائید میکند که تشکیل بیوفیلم در ایجاد مقاومت آنتیبیوتیکی نقش دارد.
نتیجهگیری: تغییر الگوی مقاومت میکروبی در میان جدایههای عفونتهای زخم سوختگی، نیاز به تنظیم درمان آنتیبیوتیکی و حتی ممکن است نیاز به روشهای درمانی غیر آنتیبیوتیکی داشته باشد. همچنین، تعیین سیستماتیک پروفایل مقاومت آنتیبیوتیکی جدایههای عفونتهای زخم سوختگی توصیه می شود.
واژه‌های کلیدی: عفونت های زخم سوختگی، باکتری های مقاوم به آنتی بیوتیک، استافیلوکوکوس اورئوس، کلبسیلا پنومونیه، سودوموناس آئروژینوزا
نوع مطالعه: پژوهشی کاربردی |
موضوع مقاله:
تخصصي
دریافت: 1403/7/11 | پذیرش: 1403/12/5 | انتشار: 1403/12/13
دریافت: 1403/7/11 | پذیرش: 1403/12/5 | انتشار: 1403/12/13
فهرست منابع
1. Mohapatra S, Gupta A, Agrawal K. Bacteriological profiles in burn patients within first twenty-four hours of injury. Int J Med Microbiol Trop Dis 2016; 2:71-4. [DOI:10.5958/2455-6807.2016.00008.8]
2. Chen YY, Wu PF, Chen CS, Chen IH, Huang WT, Wang FD. Trends in microbial profile of burn patients following an event of dust explosion at a tertiary medical center. BMC Infect Dis 2020; 20:193. [DOI:10.1186/s12879-020-4920-4] [PMID] []
3. Hemmati J, Azizi M, Asghari B, Arabestani MR. Multidrug‐Resistant Pathogens in Burn Wound, Prevention, Diagnosis, and Therapeutic Approaches (Conventional Antimicrobials and Nanoparticles). Can J Infect Dis Med Microbiol 2023; 2023(1):8854311. [DOI:10.1155/2023/8854311] [PMID] []
4. Gupta M, Naik AK, Singh SK. Bacteriological profile and antimicrobial resistance patterns of burn wound infections in a tertiary care hospital. Heliyon 2019; 5(12): e02956. [DOI:10.1016/j.heliyon.2019.e02956] [PMID] []
5. Maslova E, Eisaiankhongi L, Sjöberg F, McCarthy RR. Burns and biofilms: priority pathogens and in vivo models. NPJ Biofilms Microbiomes 2021; 7:73. [DOI:10.1038/s41522-021-00243-2] [PMID] []
6. Thomas RE, Thomas BC. Reducing biofilm infections in burn patients' wounds and biofilms on surfaces in hospitals, medical facilities and medical equipment to improve burn care: a systematic review. Int J Environ Res Public Health 2021; 18:13195. [DOI:10.3390/ijerph182413195] [PMID] []
7. Roy S, Mukherjee P, Kundu S, Majumder D, Raychaudhuri V, Choudhury L. Microbial infections in burn patients. Acute Crit Care 2024; 39(2): 214-225. [DOI:10.4266/acc.2023.01571] [PMID] []
8. Khan BA, Yeh AJ, Cheung GY, Otto M. Investigational therapies targeting quorum-sensing for the treatment of Staphylococcus aureus infections. Expert Opin Investig Drugs 2015; 24:689-704. [DOI:10.1517/13543784.2015.1019062] [PMID] []
9. Bhardwaj S, Bhatia S, Singh S, Franco F Jr. Growing emergence of drug-resistant Pseudomonas aeruginosa and attenuation of its virulence using quorum sensing inhibitors: a critical review. Iran J Basic Med Sci 2021; 24:699-719.
10. Sheridan R, Weber J, Chang P. Multi-drug resistant Gram-negative bacteria colonization and infection in burned children: lessons learned from a 20-year experience. Burns Open 2018; 2:43- 6. [DOI:10.1016/j.burnso.2017.09.002]
11. Wikler MA. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically: approved standard Clsi. 2006; 26:M7-A7
12. Keiri F, Kermanshahi RK, Feizabadi MM. The inhibitory efects of lactobacillus supernatants and their metabolites on the growth and bioflm formation of Klebsiella pneumonia. Infect Disord Drug Targets 2020; 20:902-912. [DOI:10.2174/1871526520666200106122632] [PMID]
13. Azeredo J, Azevedo NF, Briandet R, Cerca N, Coenye T, Costa AR, Desvaux M, Di Bonaventura G, Hébraud M, Jaglic Z, Kačániová M. Critical review on biofilm methods. Crit Rev Microbiol 2017; 43(3):313-351. [DOI:10.1080/1040841X.2016.1208146] [PMID]
14. Gupta M, Naik AK, Singh SK. Bacteriological profile and antimicrobial resistance patterns of burn wound infections in a tertiary care hospital. Heliyon 2019; 5: e02956. [DOI:10.1016/j.heliyon.2019.e02956] [PMID] []
15. Akya A, Najafi F, Sohrabi N, Vaziri S, Mansouri F, Azizi M, Akbarzadeh F. The systematic review of quinolones resistance of Escherichia coli isolated from urinary tract infections in Iran over the last ten years (2001-2011). Annu res rev biol 2015; 6(4):234. [DOI:10.9734/ARRB/2015/12676]
16. Idowu T, Schweizer F. Ubiquitous nature of fluoroquinolones: the oscillation between antibacterial and anticancer activities. Antibiotics 2017; 6(4):26. [DOI:10.3390/antibiotics6040026] [PMID] []
17. Bhatt S, Chatterjee S. Fluoroquinolone antibiotics: Occurrence, mode of action, resistance, environmental detection, and remediation-A comprehensive review. Environ Pollut 2022; 315:120440. [DOI:10.1016/j.envpol.2022.120440] [PMID]
18. Ranjbar R, Tolon SS, Sami M, Golmohammadi R. Detection of plasmid-mediated qnr genes among the clinical quinolone-resistant Escherichia coli strains isolated in Tehran, Iran. Open Microbiol J 2018; 12:248. [DOI:10.2174/1874285801812010248] [PMID] []
19. Henly EL, Dowling JA, Maingay JB, Lacey MM, Smith TJ, Forbes S. Biocide exposure induces changes in susceptibility, pathogenicity, and biofilm formation in uropathogenic Escherichia coli. Antimicrob Agents Chemother 2019; 63(3):10-128. [DOI:10.1128/AAC.01892-18] [PMID] []
20. McCarthy H, Rudkin JK, Black NS et al. Methicillin resistance and the biofilm phenotype in Staphylococcus aureus. Front Cell Infect Microbiol 2015; 5:1. [DOI:10.3389/fcimb.2015.00001] [PMID] []
21. Maleki L, Tukmechi A. Screening of vancomycin resistance-associated genes in methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates from cattle, sheep and goats in northwestern Iran. Vet Res Forum 2024; 15(3):159-164.
22. S Kakoullis L, Papachristodoulou E, Chra P, Panos G. Mechanisms of antibiotic resistance in important gram-positive and gram-negative pathogens and novel antibiotic solutions. Antibiotics. 2021; 10(4):415. [DOI:10.3390/antibiotics10040415] [PMID] []
23. Jahromi MA, Zangabad PS, Basri SM, Zangabad KS, Ghamarypour A, Aref AR, Karimi M, Hamblin MR. Nanomedicine and advanced technologies for burns: Preventing infection and facilitating wound healing. Adv Drug Deliv Rev 2018; 123:33-64. [DOI:10.1016/j.addr.2017.08.001] [PMID] []
24. Mohamad SM, Rostami S, Zamanzad B, Gholipour A, Drees F. Detection of exotoxins and antimicrobial susceptibility pattern in clinical Pseudomonas aeruginosa Isolates. Avicenna J Clin Microb Infec 2017; 5(2):36-40. [DOI:10.34172/ajcmi.2018.07]
25. Safaei HG, Moghim S, Isfahani BN, Fazeli H, Poursina F, Yadegari S, Nasirmoghadas P, Nodoushan SA. Distribution of the strains of multidrug-resistant, extensively drug-resistant, and pandrug-resistant Pseudomonas aeruginosa isolates from burn patients. Adv Biomed Res 2017; 6(1):74. [DOI:10.4103/abr.abr_239_16] [PMID] []
26. Parsa P, Amirmozafari N, Nowruzi B, Bahar MA. Molecular characterization of polymorphisms among Pseudomonas aeruginosa strains isolated from burn patients' wounds. Heliyon. 2020; 6(12). [DOI:10.1016/j.heliyon.2020.e05041] [PMID] []
27. Liu X, Liu Y. Detection of plasmid-mediated AmpC β-lactamase in Escherichia coli. Biomedical reports 2016; 4(6):687-690. [DOI:10.3892/br.2016.661] [PMID] []
28. Farzi S, Ranjbar R, Niakan M, Ahmadi MH. Molecular characterization of antibiotic resistance associated with TEM and CTX-M ESBL in uropathogenic E. coli strains isolated from outpatients. Iran J Pathol 2021;16(4):386. [DOI:10.30699/ijp.2021.521669.2556] [PMID] []
29. Schilcher K, Horswill AR. Staphylococcal biofilm development: structure, regulation, and treatment strategies. Microbiol Mol Biol Rev 2020; 84(3):10-128. [DOI:10.1128/MMBR.00026-19] [PMID] []
30. Ghasemian S et al. Molecular characterizations of antibiotic resistance, biofilm formation, and virulence determinants of Pseudomonas aeruginosa isolated from burn wound infection. J Clin Lab Anal 2023; 37(4): e24850. [DOI:10.1002/jcla.24850] [PMID] []
31. Nezhad RR, Meybodi SM, Rezaee R, Goudarzi M, Fazeli M. Molecular Characterization and Resistance Profile of Methicillin Resistant Staphylococcus aureus Strains Isolated from Hospitalized Patients in Intensive Care Unit, Tehran-Iran. Jundishapur J Microbiol 2017; 10(3):1-9. [DOI:10.5812/jjm.41666]
32. Nourbakhsh F, Momtaz H. Evaluation of Phenotypic and Genotypic Biofilm Formation in Staphylococcus aureus Isolates from Hospital Infections in Shahrekord. J Arak Uni Med Sci 2015; 19(109):69-79. (In Persian)
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
