دوره 12، شماره 3 - ( تابستان 1402 )
جلد 12 شماره 3 صفحات 282-271 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Aghaie M, Asadpour L. The Study of antimicrobial and anti-biofilm synergistic effects of ciprofloxacin and Morus nigra extract against Pseudomonas aeruginosa. aumj 2023; 12 (3) :271-282
URL: http://aums.abzums.ac.ir/article-1-1745-fa.html
URL: http://aums.abzums.ac.ir/article-1-1745-fa.html
آقائی علی آبادی مرضیه، اسدپور لیلا. بررسی اثر سینرژیسم سیپروفلوکساسین و عصاره موروس نیگرا در مهار رشد و تشکیل بیوفیلم جدایه های سودوموناس آئروژینوزا. نشریه علمی پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی البرز. 1402; 12 (3) :271-282
1- دانش آموخته، گروه زیست شناسی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
2- دانشیار، گروه زیست شناسی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
2- دانشیار، گروه زیست شناسی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
چکیده: (736 مشاهده)
زمینه و هدف: سودوموناس آئروژینوزا یک باکتری گرم منفی و یکی از مهم ترین پاتوژن های فرصت طلب ایجاد کننده عفونت های بیمارستانی است که معمولا به طور همزمان مقاومت چند دارویی کسب می کند. این مطالعه با هدف بررسی اثر هم افزایی سیپروفلوکساسین و عصاره موروس نیگرا در مهار رشد و تشکیل بیوفیلم سودوموناس آئروژینوزا انجام شد.
مواد و روش ها: این مطالعه بر روی ۱۰ جدایه سودوموناس آئروژینوزای با مقاومت چندگانه آنتی بیوتیکی انجام شد. از روش دیسک دیفیوژن برای تعیین مقاومت آنتی بیوتیکی سویه ها استفاده گردید. برای بررسی برهم کنش های ضدمیکروبی بین عصاره موروس نیگرا با آنتی بیوتیک سیپروفلوکساسین از روش تیتراسیون چکربورد و محاسبه شاخص غلظت های ممانعت کننده سهمی (FICI) استفاده شد. تاثیر عصاره موروس نیگرا، آنتی بیوتیک سیپروفلوکساسین و ترکیب این دو بر بیان ژن بیوفیلم pslA به روش ریل تایم PCR بررسی شد.
یافته ها: عصاره موروس نیگرا به تنهایی اثر ضدمیکروبی علیه سویه های پاتوژن سودوموناس نشان داد. استفاده از این عصاره در ترکیب با آنتی بیوتیک سیپروفلوکساسین بر مهار رشد جدایه های سودوموناس آئروژینوزا اثر افزایشی داشت و سبب کاهش بیش از ۶۰ درصدی تشکیل بیوفیلم جدایه ها گردید (P˂0.05). همچنین عصاره موروس نیگرا به تنهایی و در ترکیب با آنتی بیوتیک سیپروفلوکساسین به طور معنی داری سبب کاهش بیان ژن pslA گردید.
نتیجه گیری: نتایج حاضر در خصوص امکان استفاده از عصاره موروس نیگرا در افزایش اثر آنتی بیوتیک امیدوار کننده است. ممکن است استفاده از این عصاره با و یا به جای آنتی بیوتیک ها راهی برای کاهش استفاده از داروهای آنتی بیوتیک موجود باشد و بدین ترتیب عوارض جانبی و هزینه های درمانی بیماری های عفونی را کاهش دهد.
مواد و روش ها: این مطالعه بر روی ۱۰ جدایه سودوموناس آئروژینوزای با مقاومت چندگانه آنتی بیوتیکی انجام شد. از روش دیسک دیفیوژن برای تعیین مقاومت آنتی بیوتیکی سویه ها استفاده گردید. برای بررسی برهم کنش های ضدمیکروبی بین عصاره موروس نیگرا با آنتی بیوتیک سیپروفلوکساسین از روش تیتراسیون چکربورد و محاسبه شاخص غلظت های ممانعت کننده سهمی (FICI) استفاده شد. تاثیر عصاره موروس نیگرا، آنتی بیوتیک سیپروفلوکساسین و ترکیب این دو بر بیان ژن بیوفیلم pslA به روش ریل تایم PCR بررسی شد.
یافته ها: عصاره موروس نیگرا به تنهایی اثر ضدمیکروبی علیه سویه های پاتوژن سودوموناس نشان داد. استفاده از این عصاره در ترکیب با آنتی بیوتیک سیپروفلوکساسین بر مهار رشد جدایه های سودوموناس آئروژینوزا اثر افزایشی داشت و سبب کاهش بیش از ۶۰ درصدی تشکیل بیوفیلم جدایه ها گردید (P˂0.05). همچنین عصاره موروس نیگرا به تنهایی و در ترکیب با آنتی بیوتیک سیپروفلوکساسین به طور معنی داری سبب کاهش بیان ژن pslA گردید.
نتیجه گیری: نتایج حاضر در خصوص امکان استفاده از عصاره موروس نیگرا در افزایش اثر آنتی بیوتیک امیدوار کننده است. ممکن است استفاده از این عصاره با و یا به جای آنتی بیوتیک ها راهی برای کاهش استفاده از داروهای آنتی بیوتیک موجود باشد و بدین ترتیب عوارض جانبی و هزینه های درمانی بیماری های عفونی را کاهش دهد.
فهرست منابع
1. Corehtash ZG, Khorshidi A, Firoozeh F, Akbari H, Aznaveh AM. Biofilm formation and virulence factors among Pseudomonas aeruginosa isolated from burn patients. Jundishapur journal of microbiology. 2015 Oct;8(10). [DOI:10.5812/jjm.22345]
2. Bogiel T, Depka D, Rzepka M, Kwiecińska-Piróg J, Gospodarek-Komkowska E. Prevalence of the genes associated with biofilm and toxins synthesis amongst the Pseudomonas aeruginosa clinical strains. Antibiotics. 2021 Feb 28;10(3):241. [DOI:10.3390/antibiotics10030241]
3. Shafiei M, Ali AA, Shahcheraghi F, Saboora A, Noghabi KA. Eradication of Pseudomonas aeruginosa Biofilms Using the Combination of n-butanolic Cyclamen coum Extract and Ciprofloxacin. Jundishapur journal of microbiology. 2014 Feb;7(2). [DOI:10.5812/jjm.14358]
4. Mohammadzadeh A, Sharifi A. Bacterial biofilm and its inhibition mechanisms relying on anti-biofilm properties of plant compounds. Experimental animal Biology. 2016 Aug 22;5(1):71-81.
5. Khameneh B, Iranshahy M, Soheili V, Fazly Bazzaz BS. Review on plant antimicrobials: a mechanistic viewpoint. Antimicrobial Resistance & Infection Control. 2019 Dec;8(1):1-28. [DOI:10.1186/s13756-019-0559-6]
6. Haroun MF, Al-Kayali RS. Synergistic effect of Thymbra spicata L. extracts with antibiotics against multidrug-resistant Staphylococcus aureus and Klebsiella pneumoniae strains. Iranian Journal of Basic Medical Sciences. 2016 Nov;19(11):1193.
7. Özgen M, Serçe S, Kaya C. Phytochemical and antioxidant properties of anthocyanin-rich Morus nigra and Morus rubra fruits. Scientia horticulturae. 2009 Feb 3;119(3):275-9. [DOI:10.1016/j.scienta.2008.08.007]
8. Soltan-Dallal M., Didar Z, Assessment the Antimicrobial Impacts of Manganese and Iron Doped Zinc Oxide Nanoparticles against Shigella Flexneri. Journal of Sabzevar University of Medical Sciences. 2019;26(5):575-584.
9. Javid Rad E, Keshavarzi F. Prevalence of phzM and pvdA virulence genes in pseudomonas aeruginosa isolated from Infectious disease ward patients. Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences. 2018 Feb 10;22(6):74-83.
10. Oliveira VD, Souza MT, Zanotto ED, Watanabe E, Coraça-Huber D. Biofilm Formation and Expression of Virulence Genes of Microorganisms Grown in Contact with a New Bioactive Glass. Pathogens. 2020 Nov;9(11):927. [DOI:10.3390/pathogens9110927]
11. Vaghry P, Aletaha M. Anti-biofilm effect of peppermint extract on Pseudomonas aeruginosa that isolated of hospitalized patients in Tabriz city. Journal of Neyshabur University of Medical Sciences. 2019;2(23):73-87.
12. Aminnezhad S, Kermanshahi RK, Ranjbar R. Effect of Althaea officinalis extract on growth and biofilm formation in Pseudomonas aeruginosa. Journal of Pure and Applied Microbiology. 2016;10(3):1857-63.
13. Foroughi A. A review on medicinal plants; An emphasis on antimicrobial effects. Veterinary Researches & Biological Products. 2022 Mar 21;35(1):2-17.
14. Khalid N, Fawad SA, Ahmed I. Antimicrobial activity, phytochemical profile and trace minerals of black mulberry (Morus nigra L.) fresh juice. Pak J Bot. 2011 Dec 1;43(6):91-6.
15. Shukla RK, Painuly D, Shukla A, Kumar V, Singh J, Porval A, et al. Physical evaluation, proximate analysis and antimicrobial activity of Morus nigra seeds. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 2014;7(1):191-8.
16. Mazimba O, Majinda R, Motlhanka D. Antioxidant and antibacterial constituents from Morus nigra. Pharmacy and Pharmacology. 2011;5(6):751-4. [DOI:10.5897/AJPP11.260]
17. Mahmoudi H, Zare Fahim N, Alikhani M Y, Shokoohizadeh L. Investigation of antimicrobial effect of Berberine on ciprofloxacin and imipenem resistance Acinetobacter baumannii Isolated from Hamadan Hospitals. Iran J Med Microbiol. 2020; 14 (1) :44-54. [DOI:10.30699/ijmm.14.1.44]
18. Silva DM, COSTA PA, Ribon AO, Purgato GA, Gaspar DM, Diaz MA. Plant extracts display synergism with different classes of antibiotics. Anais da Academia Brasileira de Ciências. 2019 May 13;91 (2). [DOI:10.1590/0001-3765201920180117]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
